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實驗動物的分組
(一)分組的原則:進行動物實驗時,經常需要將選擇好的實驗動物按研究的需要分成若干組。模型動物xue清中4-xiong烯二酮、總gao酮、游離gao酮、胰島素(Ins)和C-肽均顯著升高。動物分組應按隨機分配的原則,使每只動物都有同等機會被分配到各個實驗組與對照組中去,以避免各組之間的差別,影響實驗結果,特別是進行準確的統計檢驗,必須在隨機分組的基礎上進行。
每組動物數量應按實驗周期長短、實驗類型及統計學要求而定。如果是慢性實驗或需要定期處死動物進行檢驗的實驗,就要求選較多的動物,以補足動物自然和認為處死所喪失的數量,確保實驗結束時有合乎統計學要求的動物數量存在。
(二)建立對照組:分組時應建立對照組。1.自身對照組:是指實驗數據而言。先將動物、固定、局部除毛、消毒皮膚,然后估計好皮膚到的距離,把穿刺針的長度固定好。實驗動物本身在實驗處理前、后兩個階段的各項相關數據就分別是對照組和實驗組的實驗結果,此法可排除生物間的個體差異。2.平行對照組:有正對照組和負對照組兩種。給實驗組動物某種處理,而給正對照組用同樣方法進行處理,但并不采用實驗所要求的或手段,負對照組則不給任何處理。3.具體分組時,應避免人為因素, 隨機把所有的動物進行編號,然后令其雙數為A組(實驗組),單數為B組(對照組)即可或反之。如果要分若干個組時,應該用隨機數字表示進行完全隨機分組。
實驗動物大、小鼠的采血方法
1、動物實驗中剪尾采血:需血量少時可用此方法。將動物固定,顯露尾部,將尾塵剪去約5mm,從尾根部向尾端部,血即從斷端流出。如作的研究工作,就必須了解哪種動物是高癌種,哪種是低癌種,各種動物自發性的發生率是多少。若用二棉球涂擦尾部或事先將鼠尾浸在45℃水中數分鐘,使尾部血管充盈,可采到較多的血,但注意二可致溶血。也可用鋒利刀片割破尾動脈或尾靜脈,讓血液自行流出,采血后,消毒,止血。如將動物取血量可更多些。小鼠每次采血約0.1ml,大鼠約0.4 ml。為了多次反復取血應盡量從鼠尾末端開始。
2、動物實驗中摘眼球采血:此法常用于鼠類大量采血。(三)慢性不可預見性應激模型大鼠經歷一系列嚴重的應激因子(如噪聲、強光刺激、長時間行為限制等)后表現出活動能力下降。用左手固定動物,壓迫眼球,盡量使眼球突出,右手用無鉤彎鑷子或彎止血鉗迅速摘除眼球,立即將鼠倒置,頭朝下,眼眶內很快流出血液。一般只適用于一次采血。大部動物采血后可以存活,可采另一側眼球取血。
大鼠后眼框靜脈叢取血方法
4、動物實驗中頸靜脈或頸動脈采血:將鼠,剪去一側頸部外側被毛,作頸靜脈或頸動脈分離手術,用即可抽出所需血量。也可插入導管,反復采血。
5、斷頭采血:操作者左手拇指和食指握住鼠頸部,頭朝下,用利剪在頭頸間1/2處迅速剪動物頭部,提起動物,血液即可流入準備好的容器中。
6、心臟采血:將動物,使其仰位固定,剪去胸前區毛,消毒皮膚,在左側第3—4肋間選擇心博強處穿刺,血液借心臟跳動的力量進入。亦可在動物后,切開動物胸腔,直視心臟內抽血或剪破心臟,直接用、吸管等吸血。
記憶再現缺失動物模型怎么制備/
1.建模材料動物:老鼠1,藥1物:酒精,設備:DS-2老鼠聲光單向穿梭箱。
2.建立模型的方法是訓練以避開黑暗。如果是取少量的作檢查,可將胸骨或股骨剪斷,將其斷面的擠在有稀釋液的玻片上,混勻后涂片涼干即可染色檢查。訓練后,在重新測試前30分鐘給予小鼠40%酒精0.1 ml/10 g,然后重新測試并在30分鐘后測試記憶力。也可以使用皮下1注she,并且在訓練前5分鐘和訓練后24小時向小鼠注she10 ml/kg的40%酒精。
避免使用深色方法:在實驗過程中,將鼠標臉放回明亮房間的孔中,然后同時啟動計時器。動物離開洞穴,進入黑暗的房間,受到電1擊,計時自動停止。模型實驗只是一種間接性研究,只可能在一個局部或幾個方面與人類疾病相似。彈出鼠標,記錄下進入暗室所需的時間,然后將其置于暗室中,然后經歷電1擊。這是潛伏期。 24小時后重復測試,并記錄進入暗室的動物數量,潛伏期和5分鐘內的電1擊次數(錯誤的次數)。如果您沒有在5分鐘內進入暗室,則潛伏期為300秒。
3.建模原理酒精具有抑制情緒的作用,這可能會影響記憶力。
4.建模后的更改。該飼料用酪蛋白或大豆作為蛋白來源,另加蔗糖、豬油、維生素粉、鹽和定量的L-胱酸而組成。激動時,我在服藥后20分鐘內出現,此后變得安靜,但步態卻搖擺不定。暗保護方法表明正常對照組的測試錯誤數為(0.96±0.58)s,測試錯誤的潛伏期為(221.2±29.8)s。模型組中的測試錯誤數為(3.74±0.69),測試錯誤的潛伏期為(48.7±19.3)s。平臺跳躍和水迷宮實驗均顯示出明顯的記憶障礙。